本發(fā)明涉及一種新型農(nóng)藥及制備方法和應(yīng)用，具體涉及向日葵花盤抑菌劑及其在抑制細(xì)胞壁降解酶的活性中的應(yīng)用。
背景技術(shù)：
干腐病是馬鈴薯常見病害之一，是造成馬鈴薯塊莖采后損失的最主要病害(Antifungal Activity of the Essential Oil of Zanthoxylum bungeanum and its Major Constituent on Fusarium sulphureum and Dry Rot of Potato Tubers[J].LiXing-dong,Phytoparasitica,2014,42(4):509-517)，發(fā)病癥狀主要是浸染塊莖發(fā)病初期僅局部變褐色稍凹陷，擴(kuò)大后病部出現(xiàn)很多皺褶，呈同心輪紋狀，其上有時長出灰白色的絨狀顆粒。由馬鈴薯干腐病引起的塊莖腐爛約占病薯的88.5％(甘肅省定西地區(qū)馬鈴薯塊莖干腐病病原真菌的分離鑒定[J],何蘇琴,云南農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報,2004,19(5):550-552)，嚴(yán)重影響馬鈴薯的產(chǎn)量和質(zhì)量，給馬鈴薯種植業(yè)帶來巨大的經(jīng)濟(jì)損失。
在實際生產(chǎn)中抗干腐病的馬鈴薯品種較少，主要通過采后應(yīng)用噻苯咪唑等真菌殺菌劑對引起馬鈴薯干腐病主要病原菌硫色鐮刀菌(Fusarium sulphureum)進(jìn)行控制。由于化學(xué)合成類農(nóng)藥易對農(nóng)業(yè)生態(tài)環(huán)境造成影響，并在作物中產(chǎn)生蓄積，進(jìn)而影響人類健康，因而化學(xué)合成類農(nóng)藥在防治馬鈴薯干腐病的應(yīng)用中逐漸減少使用。
技術(shù)實現(xiàn)要素：
有鑒于此，本發(fā)明的目的在于提供一種植物源抑菌劑-向日葵花盤提取物，使所述向日葵花盤提取物對引起的馬鈴薯干腐病的硫色鐮刀菌有較好的抑制作用，從而達(dá)到對馬鈴薯干腐病的高效防治的目的。
為了實現(xiàn)上述發(fā)明目的，本發(fā)明提供以下技術(shù)方案：
本發(fā)明提供了向日葵花盤抑菌劑，包括為以向日葵花盤為原料，采用溶劑提取方法獲得的向日葵花盤提取物，所述的溶劑為水。
優(yōu)選的，所述向日葵花盤的質(zhì)量與溶劑的體積比為1kg：(5～15)L。
優(yōu)選的，所述提取的方法包括以下步驟：
1)將向日葵花盤粉碎，得到的向日葵花盤粉末；
2)將所述向日葵花盤粉末與溶劑混合，浸提，得到浸提液；
3)將所述步驟2)得到的浸提液離心，得到的上清液為向日葵花盤提取物。
優(yōu)選的，所述浸提的時間為3～5d。
優(yōu)選的，所述步驟3)中的離心后還包括：將得到的上清液進(jìn)行濃縮和干燥。
本發(fā)明還提供了所述述的向日葵花盤抑菌劑的制備方法，其特征在于，包括以下步驟：
1)將向日葵花盤粉碎，得到的向日葵花盤粉末；
2)將所述向日葵花盤粉末與溶劑混合，浸提，得到浸提液，所述溶劑為水；
3)將所述步驟2)得到的浸提液離心，得到的上清液為向日葵花盤抑菌劑。
優(yōu)選的，所述步驟2)中的向日葵花盤粉末在與溶劑混合前過60～100目篩。
優(yōu)選的，所述步驟3)中離心的轉(zhuǎn)速為2000～4000r/min轉(zhuǎn)速；所述步驟3)中的離心的時間為10～20min。
本發(fā)明還提供了所述的向日葵花盤抑菌劑或所述方法制備的向日葵花盤抑菌劑在抑制馬鈴薯干腐病菌分泌的細(xì)胞壁降解酶的活性中的應(yīng)用。
優(yōu)選的，所述細(xì)胞壁降解酶包括多聚半乳糖醛酸酶(PG)、果膠甲基半乳糖醛酸酶(PMG)、纖維素酶(Cx)或β-葡萄糖苷酶。
優(yōu)選的，所述向日葵花盤抑菌劑中向日葵花盤提取物的質(zhì)量濃度為300～340mg/ml。
本發(fā)明提供了向日葵花盤抑菌劑，包括以向日葵花盤為原料采用溶劑提取獲得的向日葵花盤提取物，所述溶劑為水。用水作為溶劑提取向日葵花盤中的活性物質(zhì)，所得向日葵花盤水提取中的活性物質(zhì)具有抑菌功能。
同時，本發(fā)明提供了向日葵花盤抑菌劑，提取的原料來源廣泛，容易獲得，通過將向日葵花盤提取抑菌物質(zhì)，將向日葵花盤變廢為寶，同時減少了向日葵花盤因焚燒對環(huán)境造成的污染，也降低了向日葵花盤的處理成本。
本發(fā)明還提供一種所述的向日葵花盤抑菌劑的制備方法，將向日葵花盤粉碎后得到的粉末與溶劑混合，浸提，離心，得到的上清液為向日葵花盤抑菌劑。所述制備方法具有方法簡單，操作簡便，制備方法對操作人員的技術(shù)要求不高，重復(fù)性好的特點。
本發(fā)明還提供所述的向日葵花盤抑菌劑在抑制馬鈴薯干腐病中的應(yīng)用。所述向日葵花盤抑菌劑能夠有效抑制造成馬鈴薯干腐病的細(xì)胞壁降解酶的活性，從而達(dá)到對馬鈴薯干腐病的抑制效果。實施例數(shù)據(jù)表明，PG酶活性與空白對照相比抑制率為23.42％～35.19％；PMG酶活性與空白對照相比抑制率為35.20％～40.47％；Cx酶活性與空白對照相比抑制率為38.21％～52.66％；β-葡萄糖苷酶活性與空白對照相比抑制率為47.47％～56.59％。
進(jìn)一步的，本發(fā)明所述的向日葵花盤抑菌劑對多聚半乳糖醛酸酶、果膠甲基半乳糖醛酸酶、纖維素酶和β-葡萄糖苷酶的活性具有較好的抑制活性。多聚半乳糖醛酸酶、果膠甲基半乳糖醛酸酶、纖維素酶和β-葡萄糖苷酶是引起馬鈴薯干腐病的最為嚴(yán)重的4種細(xì)胞壁降解酶，通過對上述4種酶活性的抑制從而達(dá)到對馬鈴薯干腐病的抑制效果。所述向日葵花盤抑菌劑對
具體實施方式
本發(fā)明提供了向日葵花盤抑菌劑，包括以向日葵花盤為原料、采用溶劑提取獲得的向日葵花盤提取物，所述溶劑為水。
本發(fā)明提供了向日葵花盤抑菌劑，采用水為溶劑提取向日葵花盤中的不同種類的活性物質(zhì)，提取得到的向日葵花盤水提物中的活性物質(zhì)具有抑菌功能。
在本發(fā)明中，所述向日葵花盤的質(zhì)量與溶劑的體積比優(yōu)選為1kg：(5～15)L，更優(yōu)選為1kg：10L。
在本發(fā)明中，所述提取的方法優(yōu)選包括以下步驟：
1)將向日葵花盤粉碎，得到向日葵花盤粉末；
2)將所述向日葵花盤粉末與溶劑混合，浸提，得到浸提液；
3)將所述步驟2)得到的浸提液離心，得到的上清液為向日葵花盤提取物。
在本發(fā)明中，所述向日葵花盤選擇無蟲害、霉變的向日葵花盤。
在本發(fā)明中，所述向日葵花盤優(yōu)選在粉碎之前進(jìn)行烘干。所述烘干的溫度優(yōu)選為35～60℃，更優(yōu)選為37～50℃；烘干的時間優(yōu)選為1～5h，更優(yōu)選為2～4h。
在本發(fā)明中，所述粉碎的方法沒有特殊限制，采用本領(lǐng)域技術(shù)人員所熟知的粉碎方法即可。在本發(fā)明中，所述的粉碎通過研磨的方法實現(xiàn)。
在本發(fā)明中，所述粉碎后向日葵花盤的粒度優(yōu)選為60～100目，更優(yōu)選為65～80目。
得到向日葵花盤粉末后，本發(fā)明將所述向日葵花盤粉末與溶劑混合，浸提，得到浸提液。本發(fā)明對所述混合的方法沒有特殊限制，采用本領(lǐng)域技術(shù)人員所熟知的混合方法即可。在本發(fā)明實施例中，所述的混合采用攪拌的方法使原料和溶劑混合均勻。
在本發(fā)明中，所述浸提的時間為3～5d。所述浸提優(yōu)選在常溫條件下進(jìn)行。
得到浸提液后，本發(fā)明對所述浸提液進(jìn)行離心，得到上清液。在本發(fā)明中，所述離心的速度優(yōu)選為2000～4000r/min，更優(yōu)選為3500r/min。所述離心的時間為10～20min，更優(yōu)選為15min。
得到上清液后，本發(fā)明優(yōu)選將所述上清液進(jìn)行濃縮和干燥，得到向日葵花盤提取物固體粉末。
在本發(fā)明中，所述濃縮優(yōu)選為旋轉(zhuǎn)蒸餾濃縮。所述的旋轉(zhuǎn)蒸餾濃縮的溫度優(yōu)選為30～45℃，更優(yōu)選為35～40℃。所述濃縮的時間優(yōu)選為1～5h，更優(yōu)選為2～4h。
在本發(fā)明中，所述的干燥優(yōu)選為真空干燥。所述的真空干燥的冷阱溫度優(yōu)選為-25～-55℃，更優(yōu)選為-30～-45℃。所述的真空干燥的真空度優(yōu)選為15～110KPa，更優(yōu)選為30～100KPa。
在本發(fā)明中，向日葵花盤抑菌劑優(yōu)選還包括農(nóng)藥領(lǐng)域接受的輔料，制成農(nóng)藥領(lǐng)域的劑型。
本發(fā)明還提供一種所述的向日葵花盤抑菌劑的制備方法，包括以下步驟：
1)將向日葵花盤粉碎，得到的向日葵花盤粉末；
2)將所述向日葵花盤粉末與溶劑混合，浸提，得到浸提液，所述溶劑為水；
3)將所述步驟2)得到的浸提液離心，得到的上清液為向日葵花盤抑菌劑。
在本發(fā)明中，所述向日葵花盤粉末在與溶劑混合前過60～100目篩，更優(yōu)選為70～90目。
在本發(fā)明中，所述離心的轉(zhuǎn)速優(yōu)選為2000～4000r/min，更優(yōu)選為3500r/min；所述離心的時間優(yōu)選為10～20min，更優(yōu)選為15min。
本發(fā)明中，所述向日葵花盤抑菌劑優(yōu)選還包括農(nóng)藥領(lǐng)域接受的輔料。
在本發(fā)明中，所述農(nóng)藥領(lǐng)域接受的輔料的種類優(yōu)選為優(yōu)選包括潤濕劑，分散劑，崩解劑，穩(wěn)定劑，pH值調(diào)節(jié)劑，消泡劑，增效劑和填料中的一種和幾種。
在本發(fā)明中，所述向日葵花盤抑菌劑優(yōu)選制成農(nóng)藥領(lǐng)域的抑菌劑劑型。
在本發(fā)明中，所述劑型的種類優(yōu)選為水分散粒劑或可濕性粉劑。
本發(fā)明還提供了所述的向日葵花盤抑菌劑在抑制馬鈴薯干腐病菌分泌的細(xì)胞壁降解酶的活性中的應(yīng)用。
在本發(fā)明中，所述細(xì)胞壁降解酶包括多聚半乳糖醛酸酶、果膠甲基半乳糖醛酸酶、纖維素酶或β-葡萄糖苷酶。
在本發(fā)明中，所述的向日葵花盤抑菌劑的質(zhì)量濃度優(yōu)選為300～340mg/ml，更優(yōu)選為320mg/mL。
在本發(fā)明中，所述的應(yīng)用不受馬鈴薯品種的限制。本發(fā)明實施例中采用的馬鈴薯品種為隴薯7號馬鈴薯，隴薯10號馬鈴薯和新大坪馬鈴薯。
下面結(jié)合實施例對本發(fā)明提供的向日葵花盤抑菌劑、制備方法及其在防治馬鈴薯干腐病菌分泌的細(xì)胞壁降解酶的活性中的應(yīng)用進(jìn)行詳細(xì)的說明，但是不能把它們理解為對本發(fā)明保護(hù)范圍的限定。
實施例1
選擇無蟲害、霉變的向日葵花盤為原料，用粉碎機(jī)制成粉狀，過60目篩，收集得到的向日葵花盤粉末。稱取粉末1kg，與10L的水混合，加入桶中浸提5天，浸提液以3000r/min轉(zhuǎn)速離心15min，收集上清液，在45℃的條件下旋蒸濃縮2h，濃縮物經(jīng)真空冷凍干燥，得提取物粉末，4℃冰箱中保藏備用。
實施例2
選擇無蟲害、霉變的向日葵花盤為原料，用粉碎機(jī)制成粉狀，過70目篩，收集得到的向日葵花盤粉末。稱取粉末1kg，與15L的水混合，加入桶中浸提3天，浸提液以3500r/min轉(zhuǎn)速離心12min，收集上清液，在35℃的條件下旋蒸濃縮3h，濃縮物經(jīng)真空冷凍干燥，得提取物粉末，4℃冰箱中保藏備用。
實施例3
選擇無蟲害、霉變的向日葵花盤為原料，用粉碎機(jī)制成粉狀，過95目篩，收集得到的向日葵花盤粉末。稱取粉末1kg，與5L的水混合，加入桶中浸提4天，浸提液以4000r/min轉(zhuǎn)速離心10min，收集上清液，在30℃的條件下旋蒸濃縮4h，濃縮物經(jīng)真空冷凍干燥，得提取物粉末，4℃冰箱中保藏備用。
實施例4～6
實施例4采用實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成300mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行；
實施例5采用實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成320mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行；
實施例6采用實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成340mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行。
將外觀整齊、無損傷的隴薯7號馬鈴薯塊莖清洗后用1％商業(yè)漂白粉浸泡20min。洗去漂白液后，制成厚1cm直徑50mm圓型切片。用無菌水清洗切片并用75％酒精消毒后，在酒精燈上灼燒除去多余酒精，置于無菌濕濾紙上黑暗恒溫恒濕培養(yǎng)1h。將其中3枚切片的表面上均勻涂布0.5mL葵花盤水提物溶液，另兩枚不作處理。將4個培養(yǎng)1周的硫色鐮刀菌菌餅倒置接種于3枚經(jīng)抑菌液處理的切片及1枚未處理切片中央，試驗組分別設(shè)置3個平行，設(shè)置1個空白對照組(CT)，另一枚不做處理的切片接入與菌餅同樣大小的無菌培養(yǎng)基作為正常對照組(CK)，將5枚切片置于恒溫恒濕環(huán)境中培養(yǎng)。
罹病組織細(xì)胞PG、PMG、CX和β-葡萄糖苷酶的提取
所有切片組織培養(yǎng)二天時，分別從3枚平行試驗組和空白組切片組織上取3g感病部位組織，正常組取3g正常組織作為PG、PMG、CX和β-葡萄糖苷酶提取樣品，將每組樣品分別與6mL95％乙醇混合，冰浴研磨勻漿后低溫靜置10min。然后于4℃、10000×g離心10min。傾去上清液，向沉淀物中加入預(yù)冷3mL80％乙醇，震蕩，低溫放置10min后在同條件下離心。再傾去上清液，向沉淀物中加入5mL提取緩沖液(50mmol/L，PH5.5，含1.8mol/LNaCl的乙酸-乙酸鈉緩沖液)，于4℃下提取20min，再離心收集上清液，即為酶的提取液，4℃保存?zhèn)溆谩?/p>
細(xì)胞壁降解酶活性測定
采用3,5-二硝基水楊酸法制作葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線，得出葡萄糖毫克數(shù)與吸光值之間的線性回歸方程，用以計算試驗中酶反應(yīng)釋放的還原糖量。
PG和PMG活性測定
向試管中加入1.0mL乙酸-乙酸鈉緩沖液(50mmol/L，PH5.5)、0.5mL10g/L底物(PG為多聚半乳糖醛酸，PMG為果膠)，再加入0.5mL酶提取液?；靹蚝笥?7℃水浴保溫1h，保溫后立即加入1.5mL3,5-二硝基水楊酸(DNS)，沸水浴煮沸5min后迅速冷卻至室溫，按DNS法在540nm下測定吸光值。
根據(jù)酶反應(yīng)所釋放的還原糖量計算PG、PMG活性。酶活單位以每小時每克馬鈴薯組織樣品在37℃催化底物水解生成半乳糖醛酸的質(zhì)量表示(mg/h·g)，將3組試驗組的酶活平均值與空白對照組和正常組進(jìn)行比較。
PG或PMG活性＝(m，·V·1.08)/(VS·t·m)；
m，—從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得的葡萄糖質(zhì)量，mg；
V—樣品提取液總體積，mL；VS—測定時所取樣品提取液體積，mL；
t—酶促反應(yīng)時間，h；m—樣品質(zhì)量，g；
1.08—葡萄糖換算成半乳糖醛酸的系數(shù)(194/180)。
Cx與β-葡萄糖苷酶活性的測定
向試管中入1.5mL10g/L底物(Cx為羧甲基纖維素鈉CMC，β-葡萄糖苷酶為水楊苷)后按測定PG和PMG活性的方法處理。Cx和β-葡萄糖苷酶活性以每小時每克馬鈴薯組織樣品(鮮重)酶在37℃催化底物水解形成還原糖的質(zhì)量表示，即(mg/h·g)。將3組試驗組的酶活平均值與空白對照組和正常組進(jìn)行比較。
Cx與β-葡萄糖苷酶活性＝(m，·V)/(VS·t·m)；
m，—從標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得的葡萄糖質(zhì)量，mg；
V—樣品提取液總體積，mL；VS—測定時所取樣品提取液體積，mL；
t—酶促反應(yīng)時間，h；m—樣品質(zhì)量，g。
隴薯7號馬鈴薯細(xì)胞壁降解酶活性測定結(jié)果如表1所示。
表1硫色鐮刀菌侵染隴薯7號馬鈴薯分泌細(xì)胞壁降解酶活性
從表1中可以看出，質(zhì)量濃度為300～340mg/mL的向日葵花盤提取物處理硫色鐮刀菌侵染隴薯7號馬鈴薯，測定得到的細(xì)胞壁降解酶活性均低于空白對照組細(xì)胞壁降解酶活性，其中質(zhì)量濃度為320mg/mL的向日葵花盤提取物對細(xì)胞壁降解酶活性抑制性最佳。PG酶活性與空白對照相比抑制率為0.65％～9.77％；PMG酶活性與空白對照相比抑制率為17.66％～20.19％；Cx酶活性與空白對照相比抑制率為22.98％～24.64％；β-葡萄糖苷酶活性與空白對照相比抑制率為22.47％～28.64％?？梢钥闯?，質(zhì)量濃度為300mg/mL的向日葵花盤提取物對四種細(xì)胞壁裂解酶的活性結(jié)果表明，向日葵花盤提取物對β-葡萄糖苷酶活性抑制效果最好，對PG酶活性最差，對PMG酶活性和Cx酶活性的抑制效果居中。
實施例7～9
采用隴薯10號馬鈴薯作為實驗馬鈴薯；
實施例7實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成300mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行；
實施例8實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成300mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行；
實施例9實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成300mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行。
實施例7～9采用實施例4中處理方法、酶提取方法和酶活測定方法進(jìn)行實驗，隴薯10號馬鈴薯細(xì)胞壁降解酶活性測定結(jié)果如表2所示。
表2硫色鐮刀菌侵染隴薯10號馬鈴薯分泌細(xì)胞壁降解酶活性
從表2中可以看出，質(zhì)量濃度為300～340mg/mL的向日葵花盤提取物處理硫色鐮刀菌侵染隴薯10號馬鈴薯，測定得到的細(xì)胞壁降解酶活性均低于空白對照組細(xì)胞壁降解酶活性，其中質(zhì)量濃度為320mg/mL的向日葵花盤提取物對細(xì)胞壁降解酶活性抑制性最佳，說明向日葵花盤提取物對硫色鐮刀菌在隴薯10號馬鈴薯上分泌的4種細(xì)胞壁降解酶活性具有顯著抑制作用。PG酶活性與空白對照相比抑制率為23.42％～35.19％；PMG酶活性與空白對照相比抑制率為35.20％～40.47％；Cx酶活性與空白對照相比抑制率為38.21％～52.66％；β-葡萄糖苷酶活性與空白對照相比抑制率為47.47％～56.59％。可以看出，質(zhì)量濃度為320mg/mL的向日葵花盤提取物對四種細(xì)胞壁裂解酶的活性結(jié)果比質(zhì)量濃度為300mg/mL的向日葵花盤提取物對四種細(xì)胞壁裂解酶的活力的抑制效果提高顯著，向日葵花盤提取物對β-葡萄糖苷酶活性抑制效果最好，對PG酶活性最差，對PMG酶活性和Cx酶活性的抑制效果居中。
實施例10～12
采用新大坪馬鈴薯作為實驗馬鈴薯；
實施例10具體是實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成300mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行；
實施例11具體是實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成300mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行；
實施例12具體是實施例1～3制備得到的向日葵花盤水提物將濃度配制成300mg/ml的向日葵花盤水提取物處理馬鈴薯切片，每個處理三個平行。
實施例10～12采用實施例4中處理方法、酶提取方法和酶活測定方法進(jìn)行實驗，隴薯10號馬鈴薯細(xì)胞壁降解酶活性測定結(jié)果如表3所示。
表3硫色鐮刀菌侵染新大坪馬鈴薯分泌細(xì)胞壁降解酶活性
從表3中可以看出，質(zhì)量濃度為300～340mg/mL的向日葵花盤提取物處理硫色鐮刀菌侵染隴薯10號馬鈴薯，測定得到的細(xì)胞壁降解酶活性均低于空白對照組細(xì)胞壁降解酶活性，其中質(zhì)量濃度為320mg/mL的向日葵花盤提取物對細(xì)胞壁降解酶活性抑制性最佳，說明向日葵花盤提取物對硫色鐮刀菌在隴薯10號馬鈴薯上分泌的4種細(xì)胞壁降解酶活性具有顯著抑制作用。PG酶活性與空白對照相比抑制率為11.22％～31.19％；PMG酶活性與空白對照相比抑制率為6.89％～21.98％；Cx酶活性與空白對照相比抑制率為24.577％～47.14％；β-葡萄糖苷酶活性與空白對照相比抑制率為13.55％～40.43％。可以看出，質(zhì)量濃度為340mg/mL的向日葵花盤提取物對四種細(xì)胞壁裂解酶的活性結(jié)果比質(zhì)量濃度為320mg/mL的向日葵花盤提取物對四種細(xì)胞壁裂解酶的活力的抑制效果略低，向日葵花盤提取物對β-葡萄糖苷酶活性抑制效果最好，對PG酶活性最差，對PMG酶活性和Cx酶活性的抑制效果居中。
由以上實施例可知，本發(fā)明提供的向日葵花盤抑制劑在質(zhì)量濃度為300～340mg/mL的向日葵花盤提取物對硫色鐮刀菌侵染馬鈴薯分泌細(xì)胞壁降解酶活性具有抑制作用，當(dāng)向日葵花盤提取物的質(zhì)量濃度為320mg/mL時對硫色鐮刀菌侵染馬鈴薯分泌細(xì)胞壁降解酶活性抑制性最強(qiáng)，并且向日葵花盤抑制劑對不同馬鈴薯品種均具有抑制作用，并且對侵染隴薯10號馬鈴薯的病原菌的細(xì)胞壁裂解酶的活性抑制率最高。
以上所述僅是本發(fā)明的優(yōu)選實施方式，應(yīng)當(dāng)指出，對于本技術(shù)領(lǐng)域的普通技術(shù)人員來說，在不脫離本發(fā)明原理的前提下，還可以做出若干改進(jìn)和潤飾，這些改進(jìn)和潤飾也應(yīng)視為本發(fā)明的保護(hù)范圍。