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一種鞣制動物標本皮張dna的提取方法

文檔序號:540918閱讀:890來源:國知局
專利名稱:一種鞣制動物標本皮張dna的提取方法
技術領域
本發(fā)明涉及生物DNA技術領域,具體涉及一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法。
背景技術
隨著科技的發(fā)展,DNA分子標記技術已廣泛應用于生物基因組研究,生物的遺傳育種、起源進化、分類、醫(yī)學及法醫(yī)破案等諸多方面,并成為現(xiàn)代分子遺傳學和分子生物學研究與應用的主流之一。這些都是針對DNA的研究,所以提取到高純度,高濃度的DNA是所有研究的基礎。對于動物DNA的提取,最常見的是從肌肉、血液以及各種內臟中獲得,因為這些組織的DNA含量多,組織處理較容易,提出的DNA片段較完整,適用于各種分子生物學研究。但是野生動物的分子遺傳學研究經常受到個體數(shù)量、樣品來源地的空間分布、樣品采集時間跨度等的限制。要獲得一些動物的肌肉、血液,或者內臟等實驗材料都是非常困難的,對于一些己經滅絕的動物來說,這根本就是不可能的。因此在進行分子生物學研究時,需要館藏鞣制動物標本來補充野外標本收集的不足。目前鞣制動物標本皮張DNA的提取采用的是常規(guī)的動物DNA的提取方法,但是實踐證明從標本中提取DNA往往是不可行的。因為這些標本大多都經過各種處理,含有大量水溶性重金屬離子、鞣劑等酶抑制劑等,對DNA提取會有一定程度的干擾,導致從這些樣品中提取的DNA量一般都比較少,在進行PCR擴增檢查DNA提取時,僅有不到10%能夠擴增出條帶,顯示提取到DNA。因此現(xiàn)有技術存在的問題是:DNA提取量小且有重金屬離子,PCR擴增結果低,不適用于進行分子生物學研究。發(fā)明內容:
本發(fā)明的目的是要提供一種高效的鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,以克服現(xiàn)有技術存在的DNA提取量小且有重金屬離子,PCR擴增結果低,不適用于進行分子生物學研究的問題?!け景l(fā)明的目的是這樣實現(xiàn)的,一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,依次包括下述步驟:
O原料的處理:
①將經過鞣制處理的動物標本皮張在常溫下用酒精浸泡,再用蒸餾水沖洗至無雜物備
用;
②剪取皮張,用Na2HPO4溶液在不斷振蕩條件下處理2(Γ28小時,用蒸餾水沖洗2 3遍;
2)消化:
將標本用浸泡液浸泡1.5^2.5小時,棄浸泡液,用剪刀盡量剪碎,置于離心管內,向離心管內加入500μ1消化液,24ul 0.5mol/L EDTA,6ul 20mg/ml蛋白酶K,在55°C下存放3-5小時;離心分離,取200 μ I上清液于另一離心管中;
所述浸泡液為 10mmol/L Tris - HC1、100mmol/L EDTAUOOmmoI/L NaCl, pH8.0 ;
3)分離、沉淀:
向離心管中加入200 μ ITris-飽和酚(ρΗ8.0),輕輕地搖動混合8 12分鐘,離心分離,重復此步驟一次;將上清移至一個新的離心管中,再加入200 μ I氯仿,輕輕地搖動混合8^12分鐘,離心分離,取上清并重復此步驟一次;取上清移入一個新的離心管中,加入2.5倍體積的冷無水乙醇,輕輕地搖動片刻,置于冰箱中于-20 °C條件下冷凍25 35分鐘;離心分離,小心棄去上清;吸取200 μ L70%乙醇洗滌片刻,離心分離,小心棄去上清,室溫下打開離心管蓋,使乙醇蒸發(fā)10-20分鐘;用30 μ I TE (10 mmol/L Tris - HCl> 10 mmol/LEDTA, pH8.0)緩沖液室溫下溶解DNA沉淀;
4) 二次抽提:
向提取好的DNA溶液中加入7uL完全懸浮的DNA IQ 系統(tǒng)中的DNA IQ 樹脂,高速渦旋振蕩數(shù)秒鐘,并進行磁分離,分離結束后,將DNA溶液小心地轉移到容器中。上述步驟2)中消化液為Promega公司生產的Nuclei Lysis Sol’ η試劑。上述步驟4)中的磁分離步驟包括下述步驟:
①將管子放在磁分離架上,磁分離立刻進行。小心去除所有溶液,不要觸碰管壁上的樹月旨,加入100 μ L裂解緩沖液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩數(shù)秒,將管子放回到磁分離架上,并去除所有的裂解液;
②加入100μ L配制的I X洗滌液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩數(shù)秒,將管子放回到磁分離架上,去掉所有洗滌液;打開蓋子,將管子放在磁分離架上,空氣中干燥,加入25-100 μ L洗脫液,蓋上管蓋并高速渦旋振蕩數(shù)秒;
③65°C溫育51分鐘,取出溫育的管子,高速渦旋振蕩數(shù)秒,立即放到磁分離架上,分尚結束。與現(xiàn)有技術相比,本發(fā)明的優(yōu)點是:
1、本發(fā)明可有效去除重金屬離子,產品濃度大,純度高,可以用來做PCR擴增等分子實驗,在進行PCR擴增檢測DNA時,有85%以上的樣品能夠擴增出條帶,顯示提取到DNA。2、本發(fā)明適用于所有經過鞣制處理的標本皮張,也可用于皮革制品的真假鑒定、非法貿易野生動物制品物種鑒定等也可用于皮革制品的真假鑒定、非法貿易野生動物制品物種鑒定等工作。
具體實施方式
:
下面將結合實施例對本發(fā)明進行詳細地說明。實施例1:
一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,依次包括下述步驟 O原料的處理:
①將經過鞣制處理的林麝標本皮張在常溫下用酒精浸泡半小時,再用蒸餾水沖洗至無雜物備用;
②剪取約0.5 Cm2的皮張,用Iml 0.03M Na2HPO4溶液在不斷振蕩條件下處理24小時,用蒸餾水沖洗3遍;
2)消化:
將標本用浸泡液(10mmol/L Tris - HC1、100mmol/L EDTAUOOmmoI/L NaCl, pH8.0)浸泡2小時,棄浸泡液,用剪刀盡量剪碎,置于1.5ml離心管內,向離心管內加入500 μ I消化液(Promega 公司生產的 Nuclei Lysis Sol’η 試劑),24ul 0.5mol/L EDTA, 6ul 20mg/ml蛋白酶K,在55°C下存 放3小時;12000r/min離心5分鐘,取200 μ I上清液于另一離心管中;
3)分離、沉淀:
向離心管中加入200 μ ITris-飽和酚(ρΗ8.0),輕輕地搖動混10分鐘,12000 r/min離心10分鐘,重復此步驟一次;將上清移至一個新的1.5ml離心管中,再加入200 μ I氯仿,輕輕地搖動混合10分鐘,12000 r/min離心10分鐘,取上清并重復此步驟一次;取上清移入一個新的1.5ml離心管中,加入2.5倍體積的冷無水乙醇,輕輕地搖動片刻,置于冰箱中于-20 °C條件下冷凍30分鐘;13000 r/min離心15 min,小心棄去上清;吸取200 μ L70%乙醇洗滌片刻,13000 r/min離心15分鐘,小心棄去上清,室溫下打開離心管蓋,使乙醇蒸發(fā)20分鐘;用 30μ1 TE (10 mmol/L Tris - HClUO mmol/L EDTA, ρΗ8.0)緩沖液室溫下溶解DNA沉淀;
4)二次抽提:
向提取好的DNA溶液中加入7uL完全懸浮的DNA IQ 系統(tǒng)中的DNA IQ 樹脂,高速渦旋振蕩3秒鐘,并進行磁分離,所述磁分離步驟包括下述步驟:
①將管子放在MagneSphere 磁分離架上,磁分離立刻進行,小心去除所有溶液,不要觸碰管壁上的樹脂,加入100 μ L裂解緩沖液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩2秒鐘,將管子放回到磁分離架上,并去除所有的裂解液;
②加入100μ L配制的I X洗滌液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩2秒鐘,將管子放回到磁分離架上,去掉所有洗滌液,打開蓋子,將管子放在磁分離架上,空氣中干燥5分鐘,加入25 μ L洗脫液,蓋上管蓋并高速渦旋振蕩2秒鐘。③65°C溫育5分鐘。取出溫育的管子,高速渦旋振蕩2秒鐘,立即放到磁分離架上。

分離結束后,將DNA溶液小心地轉移到選定的容器中。進行PCR擴增檢測DNA,顯示提取到DNA。實施例2:
一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,依次包括下述步驟 O原料的處理:
①將經過鞣制處理的斑羚標本皮張在常溫下,用酒精浸泡40分鐘、再用蒸餾水沖洗至無雜物備用;
②剪取約Icm2的皮張,用5ml 0.03M Na2HPO4溶液在不斷振蕩條件下處理28小時,用蒸餾水沖洗3遍;
2)消化:
將標本用浸泡液(10mmol/L Tris - HC1、100mmol/L EDTAUOOmmoI/L NaCl, ρΗ8.0)浸泡2.5小時,棄浸泡液,用剪刀盡量剪碎,置于1.5ml離心管內,向離心管內加入500 μ I消化液(Promega 公司生產的 Nuclei Lysis Sol’η 試劑),24ul 0.5mol/L EDTA, 6ul 20mg/ml蛋白酶K,在55°C下存放5小時;12000r/min離心6分鐘,取200 μ I上清液于另一離心管中;
3)分離、沉淀:
向離心管中加入200 μ ITris-飽和酚(ρΗ8.0),輕輕地搖動混10分鐘,12000 r/min離心8分鐘,重復此步驟一次;將上清移至一個新的1.5ml離心管中,再加入200 μ I氯仿,輕輕地搖動混合8分鐘,12000 r/min離心12分鐘,取上清并重復此步驟一次;取上清移入一個新的1.5ml離心管中,加入2.5倍體積的冷無水乙醇,輕輕地搖動片刻,置于冰箱中于-20 °C條件下冷凍35分鐘;13000 r/min離心12min,小心棄去上清;吸取200 μ L70%乙醇洗滌片刻,13000 r/min離心12分鐘,小心棄去上清,室溫下打開離心管蓋,使乙醇蒸發(fā)15分鐘;用 30μ I TE (10 mmol/L Tris - HClUO mmol/L EDTA,ρΗ8.0)緩沖液室溫下溶解 DNA沉淀;
4)二次抽提:
向提取好的DNA溶液中加入7uL完全懸浮的DNA IQ 系統(tǒng)中的DNA IQ 樹脂,高速渦旋振蕩2秒鐘,并進行磁分離,所述磁分離步驟包括下述步驟:
①將管子放在MagneSphere 磁分離架上,磁分離立刻進行,小心去除所有溶液,不要觸碰管壁上的樹脂。加入100 μ L裂解緩沖液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩3秒鐘,將管子放回到磁分離架上,并去除所有的裂解液;
②加入100μ L配制的I X洗滌液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩3秒鐘,將管子放回到磁分離架上,去掉所有洗滌液,打開蓋子,將管子放在磁分離架上,空氣中干燥8分鐘,加入IOOy L洗脫液,蓋上管蓋并高速渦旋振蕩3秒鐘;
③65°C溫育8分鐘。取出溫 育的管子,高速渦旋振蕩3秒鐘,立即放到磁分離架上。分離結束后,將DNA溶液小心地轉移到選定的容器中。進行PCR擴增檢測DNA,顯示提取到DNA。實施例3:
一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,依次包括下述步驟 O原料的處理:
①將經過鞣制處理的金絲猴標本皮張在常溫下,用酒精浸泡25分鐘、再用蒸餾水沖洗至無雜物備用;
②剪取約0.8 cm2的皮張,用3ml 0.03M Na2HPO4溶液在不斷振蕩條件下處理24小時,用蒸餾水沖洗2遍;
2)消化:
將標本用浸泡液(10mmol/L Tris - HC1、100mmol/L EDTA、IOOmmoI/L NaCl, pH8.0)浸泡1.5小時,棄浸泡液,用剪刀盡量剪碎,置于1.5ml離心管內,向離心管內加入500 μ I消化液(Promega 公司生產的 Nuclei Lysis Sol’η 試劑),24ul 0.5mol/L EDTA, 6ul 20mg/ml蛋白酶K,在55°C下存放3小時;12000r/min離心5分鐘,取200 μ I上清液于另一離心管中;
3)分離、沉淀:
向離心管中加入200 μ ITris-飽和酚(ρΗ8.0),輕輕地搖動混8分鐘,12000 r/min離心8分鐘,重復此步驟一次;將上清移至一個新的1.5ml離心管中,再加入200 μ I氯仿,輕輕地搖動混合8分鐘,12000 r/min離心12分鐘,取上清并重復此步驟一次;取上清移入一個新的1.5ml離心管中,加入2.5倍體積的冷無水乙醇,輕輕地搖動片刻,置于冰箱中于-20 °C條件下冷凍25分鐘;13000 r/min離心12min,小心棄去上清;吸取200 μ L70%乙醇洗滌片刻,13000 r/min離心12分鐘,小心棄去上清,室溫下打開離心管蓋,使乙醇蒸發(fā)15分鐘;用 30μ I TE (10 mmol/L Tris - HClUO mmol/L EDTA,ρΗ8.0)緩沖液室溫下溶解 DNA沉淀;
4)二次抽提:
向提取好的DNA溶液中加入7uL完全懸浮的DNA IQ 系統(tǒng)中的DNA IQ 樹脂,高速渦旋振蕩2秒鐘,并進行磁分離,所述磁分離步驟包括下述步驟:
①將管子放在MagneSphere 磁分離架上,磁分離立刻進行,小心去除所有溶液,不要觸碰管壁上的樹脂。加入100 μ L裂解緩沖液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩3秒鐘,將管子放回到磁分離架上,并去除所有的裂解液;
②加入100μ L配制的I X洗滌液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩3秒鐘,將管子放回到磁分離架上,去掉所有洗滌液,打開蓋子,將管子放在磁分離架上,空氣中干燥8分鐘,加入100 μ L洗脫液,蓋上管蓋并高速渦旋振蕩3秒鐘;
③65°C溫育8分鐘。取出溫育的管子,高速渦旋振蕩3秒鐘,立即放到磁分離架上。分離結束后,將DNA溶液小心地轉移到選定的容器中。進行PCR擴增檢 測DNA,顯示提取到DNA。
權利要求
1.一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,其特征在于:依次包括下述步驟: O原料的處理: ①將經過鞣制處理的動物標本皮張在常溫下用酒精浸泡,再用蒸餾水沖洗至無雜物備用; ②剪取皮張,用Na2HPO4溶液在不斷振蕩條件下處理2(Γ28小時,用蒸餾水沖洗2 3遍; 2)消化:將標本用浸泡液浸泡1.5^2.5小時,棄浸泡液,用剪刀盡量剪碎,置于離心管內,向離心管內加入500μ1消化液,24ul 0.5mol/L EDTA,6ul 20mg/ml蛋白酶K,在55°C下存放3-5小時;離心分離,取200 μ I上清液于另一離心管中; 所述浸泡液為 10mmol/L Tris - HC1、100mmol/L EDTAUOOmmoI/L NaCl, pH8.0 ; 3)分離、沉淀: 向離心管中加入200 μ ITris-飽和酚(ρΗ8.0),輕輕地搖動混合8 12分鐘,離心分離,重復此步驟一次;將上清移至一個新的離心管中,再加入200μ I氯仿,輕輕地搖動混合8 12分鐘,離心分離,取上清并重復此步驟一次;取上清移入一個新的離心管中,加入2.5倍體積的冷無水乙醇,輕輕地搖動片刻,置于冰箱中于-20 °C條件下冷凍25 35分鐘;離心分離,小心棄去上清;吸取200 μ L70%乙醇洗滌片刻,離心分離,小心棄去上清,室溫下打開離心管蓋,使乙醇蒸發(fā)10-20分鐘;用30 μ I TE (10 mmol/L Tris - HCl> 10 mmol/LEDTA, pH8.0)緩沖液室溫下溶解DNA沉淀; 4)二次抽 提: 向提取好的DNA溶液中加入7uL完全懸浮的DNA IQ 系統(tǒng)中的DNA IQ 樹脂,高速渦旋振蕩數(shù)秒鐘,并進行磁分離,分離結束后,將DNA溶液小心地轉移到容器中。
2.根據(jù)權利要求1所述的一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,其特征在于:所述步驟2)中消化液為Promega公司生產的Nuclei Lysis Sol’ η試劑。
3.根據(jù)權利要求1或2所述的一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法,其特征在于:所述步驟4)中的磁分離步驟包括下述步驟: ①將管子放在磁分離架上,磁分離立刻進行,小心去除所有溶液,不要觸碰管壁上的樹脂,加入100 μ L裂解緩沖液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩數(shù)秒,將管子放回到磁分離架上,并去除所有的裂解液; ②加入100μ L配制的I X洗滌液,從磁分離架上取下管子,并高速渦旋振蕩數(shù)秒,將管子放回到磁分離架上,去掉所有洗滌液;打開蓋子,將管子放在磁分離架上,空氣中干燥,加入25-100 μ L洗脫液,蓋上管蓋并高速渦旋振蕩數(shù)秒; ③65°C溫育51分鐘,取出溫育的管子,高速渦旋振蕩數(shù)秒,立即放到磁分離架上,分尚結束。
全文摘要
本發(fā)明涉及一種鞣制動物標本皮張DNA的提取方法。DNA提取量小且有重金屬離子,PCR擴增結果低,不適用于進行分子生物學研究。本發(fā)明先將標本皮張在常溫下用酒精浸泡,再用蒸餾水沖洗至無雜物,用Na2HPO4溶液在不斷振蕩條件下處理20~28小時,用蒸餾水沖洗2~3遍;將標本用浸泡液浸泡1.5~2.5小時,置于離心管內,向離心管內加入500μl消化液,再進行離心分離、沉淀;二次抽提時加入7uL完全懸浮的DNAIQTM系統(tǒng)中的DNAIQTM樹脂,高速渦旋振蕩數(shù)秒鐘,并進行磁分離,分離結束后,將DNA溶液小心地轉移到容器中。本發(fā)明可有效去除重金屬離子,產品濃度大,純度高,適用于所有經過鞣制處理的標本皮張。
文檔編號C12N15/10GK103243089SQ20131019665
公開日2013年8月14日 申請日期2013年5月24日 優(yōu)先權日2013年5月24日
發(fā)明者馮成利, 馮慧, 任軼, 黨蕊葉, 蔣志武 申請人:陜西省動物研究所
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